Изображение на обложке

Зависимость хроматографических параметров антоцианов в обращенно-фазовой ВЭЖХ от кислотности подвижной фазы

L. P. Blinova, V. I. Deineka, D. N. Blinov, L. A. Deineka

Аннотация


Методом обращенно-фазовой ВЭЖХ на стационарной фазе SymmetryTMC18 определены параметры пиков 3-глюкозидов пяти антоцианидинов экстракта листьев Cercis canadensis в элюентах систем ацетонитрил–муравьиная кислота–вода и ацетонитрил–ортофосфорная кислота–вода при различных объемных концентрациях кислот. Установлено, что уменьшение концентрации кислот сопровождается дополнительным уширением пиков и уменьшением площади пиков в зависимости от строения антоцианов. Лучшими подвижными фазами можно считать смеси с возможно более высокой концентрацией кислоты (с рН 1 и менее), но вследствие неустойчивости обычных «мономерных» С18 стационарных фаз при рН менее 2, используют менее кислые подвижные фазы, например, содержащие 10 об. % муравьиной кислоты (рН около 1.3) или 2 об. % ортофосфорной кислоты (рН около 1.2). Снижение концентрации кислот до 6 и 1 об. % для муравьиной и ортофосфорной кислот обычно приемлемо, хотя при этом рН (около 1.5) также остается за пределами устойчивости традиционных обращенных фаз.

Ключевые слова: антоцианы, обращенно-фазовая ВЭЖХ, рН подвижных фаз, уширение пиков, площадь пиков

Полный текст:

PDF

Литература


REFERENCES

Welch C.R., Wu Q., Simon J.E. Recent Advances in Anthocyanin Analysis and Characterization. Curr. Anal. Chem., 2008, vol. 4, pp. 75–101. doi:10.2174/157341108784587795.

Andersen Ø.M., Francis G.W. Simultaneous analysis of anthocyanins and anthocyanidins on cellulose thin layers. J. Chromatogr., 1985, vol. 318, pp. 450-454. doi:10.1016/S0021-9673(01)90714-9.

Schwarz M., Hillebrand S., Habben S., Degenhardt A., Winterhalter P. Application of high-speed countercurrent chromatography to the large-scale isolation of anthocyanins. Biochem. Engineer. J., 2003, vol. 14, pp. 179-189. doi:10.1016/S1369-703X(02)00219-X.

da Costa C.T., Horton D., Margolis S.A. Analysis of anthocyanins in foods by liquid chromatography, liquid chromatography–mass spectrometry and capillary electrophoresis. J. Chromatogr. A., 2000, vol. 881, pp. 403–410. doi:10.1016/S0021-9673(00)00328-9.

Yuzuak S., Ma Q., Lu Y., Xie D.-Y. Chapter HPLC-MS(n) Applications in the Analysis of Anthocyanins in Fruits / In “High Performance Liquid Chromatography - Recent Advances and Applications” Ed. Nunes O., Sentellas S., Grandos M., Saurina J.: IntechOpen (May 24, 2023). doi:10.5772/intechopen.110466.

Willemse C.M., Stander M.A., de Villiers A. Hydrophilic interaction chromatographic analysis of anthocyanins. J. Chromatogr. A., 2013, vol. 1319, pp. 127-140. doi:10.1016/j.chroma.2013.10.045.

Deineka V.I., Saenko I.I., Deineka L.A., Blinova I.P. [Hydrophilic Interaction Chromatography as an Alternative to Reversed-Phase HPLC in Determining Anthocyanins and Betacyanins]. Zh. analit. khimii. [J. Anal. Chem.], 2016, vol. 71, no. 3, pp. 310-314. (in Russian).

Castaneda-Ovando A., de Lourdes Pacheco-Hernandez M., Paez-Hernandez E., Rodriguez J.A., Galan-Vidal C.A. Chemical studies of anthocyanins: A review. Food Chem., 2009. vol. 113, pp. 859–871. doi:10.1016/j.foodchem.2008.09.001.

Trouillas P, Sancho-García J.C., De Freitas V., Gierschner J., Otyepka M., Dangles O. Stabilizing and Modulating Color by Copigmentation: Insights from Theory and Experiment. Chem. Rev., 2016, vol. 116, pp. 4937−4982. doi:10.1021/acs.chemrev.5b00507.

Mónica Giusti M., Wrolstad R.E. Characterization and Measurement of Anthocyanins by UV-Visible Spectroscopy. Current Protocols in Food Analyt. Chem. 2001. F1.2.1-F1.2.13. doi:10.1002/0471142913.faf0102s00.

GOST 32709 - 2014 Produkciya sokovaya. Metody opredeleniya antocianinov. [State Standard 32709 – 2014. Juice products. Methods for determination of anthocyanins]. Moscow, Standartinform Publ., 2014. 18 p. (in Russian).

Lee J., Rennaker C., Wrolstad R.E. Correlation of two anthocyanin quantification methods: HPLC and spectrophotometric methods. Food Chem., 2008, vol. 110, pp. 782–786. doi:10.1016/j.foodchem.2008.03.010.

Deineka V.I., Oleinits E.Yu., Blinova I.P., Deineka L.A [Selectivity Control of the Separation of Anthocyanins: Replacing Acetonitrile for Methanol in the Mobile Phase]. Zh. analit. khimii. [J. Anal. Chem.], 2021, vol. 76, pp. 939–945. (in Russian).

Doronin A., Deineka V., Deineka L., Tretiakov V., Tokhtar V., Chulkov A. Peculiarities of Use of Bentonite Clay at Solid-Phase Purification of Anthocyanins and Flavonoids from Leaves of Plants Proceedings of the 1st International Symposium Innovations in Life Sciences (ISILS 2019). Adv. Biol. Sci. Res., 2019, vol. 7, pp. 90-93. doi:10.2991/isils-19.2019.21.

Salasina Ya.Yu., Kalinikin D.A., Deineka V.I., Deineka L.A. [Some regularities in the process of anthocyanin extraction from vegetable sources]. Izvestiya Vuzov. Prikladnaya Khimiya i Biotekhnologiya [Proceedings of Universities. Applied Chemistry and Biotechnology]. 2020, vol. 10, pp. 691–699. doi:10.21285/2227-2925-2020-10-4-691-699. (In Russian).

Deineka V.I., Blinova I.P. [Efficiency Maps for Comparing the Properties of Different Chromatographic Systems]. Zh. fiz. khimii [J. Phys. Chem.], 2023, vol. 97, pp. 2577–2581(in Russian).




DOI: https://doi.org/10.15826/analitika.2025.29.2.004

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.