Изображение на обложке

УВЭЖХ-МСВР ОПРЕДЕЛЕНИЕ ДАНСИЛЬНЫХ ПРОИЗВОДНЫХ АДРЕНАЛИНА И ДОФАМИНА В СЛЮНЕ ЧЕЛОВЕКА

A. A. Azaryan, E. V. Dmitrieva, A. Z. Temerdashev

Аннотация


В последнее десятилетие большой интерес вызывает определение катехоламинов в биологических жидкостях человека. Изменение эндогенных уровней таких катехоламинов, как адреналин и дофамин, в организме приводит к неврологическим нарушениям, а также ряду заболеваний, а именно болезни Альцгеймера и Паркинсона, нейроэндокринным катехоламинпродуцирующим опухолям – феохромоцитома, параганглиома, карциноидные опухоли и нейробластома. Кроме того, комбинации различных препаратов, могут приводить к искажениям в биологическом паспорте человека, включающего в себя не только сведения об эритропоезе и стероидном профиле, но и содержании ряда катехоламинов, определение которых также сопряжено с рядом трудностей как в части подготовки проб, так и их анализе. Предложена методика определения дансильных производных адреналина и дофамина в слюне человека, включающая дериватизацию и определение аналитов методом ультравысокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием высокого разрешения. Проведение процедуры дериватизации позволило получить менее полярные производные катехоламинов, что особенно важно для их количественного анализа в режиме обращенно-фазовой ультравысокоэффективной жидкостной хроматографии, поскольку обеспечивает их лучшее удерживание на сорбенте. Оценена чувствительность определения этих веществ предложенным методом, установлено, что наибольшей чувствительности можно добиться с использованием подвижной фазы, состоящей из 0.1 % водного раствора муравьиной кислоты и ацетонитрила. Нижняя граница определяемых концентраций составила 5 нг/мл для дансиладреналина, 10 нг/мл для дансилдофамина. Предложенная методика апробирована на реальных образцах слюны, полученных от добровольцев с целью установления содержания дансильных производных катехоламинов в режиме обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием высокого разрешения. Высокая чувствительность методики позволяет применять ее для определения адреналина и дофамина при клинической диагностике.

Ключевые слова: адреналин, дофамин, катехоламины, УВЭЖХ-МСВР, слюна, биологические жидкости, дериватизация.

DOI: http://dx.doi.org/10.15826/analitika.2020.24.4.004

Полный текст:

PDF

Литература


REFERЕNCES

Chunxiao L., Qing L., Xujia L., Bosai H., Zhenyu S., Huarong X., Yidi Y., Ran L., Kaishun B. Determination of catecholamines and their metabolites in rat urine by ultra-performance liquid chromatography–tandem mass spectrometry for the study of identifying potential markers for Alzheimer's disease. J. Mass Spectrom., vol. 50, pp. 354–363. DOI: 10.1002/jms.3536.

Ma J., Qiu H., Rui Q., Liao Y., Chen Y., Xu J., Zhan P., Zhao Y. Fast determination of catecholamines in human plasma using carboxyl-functionalized magnetic-carbon nanotube molecularly imprinted polymer followed by liquid chromatographytandem quadrupole mass spectrometry. J. Chromatogr. A, vol. 1429, pp. 86–96. DOI: 10.1016/j.chroma.2015.12.030.

Thomas A., Geyer H., Mester H.J., Schänzer W., Zimmermann E., Thevis M. Quantitative determination of adrenaline and noradrenaline in urine using liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Chromatographia, vol. 64, pp. 587–591. DOI: 10.1365/s10337-006-0067-8.

Davis, E. Loiacono R., Summers R.J. The rush to adrenaline: drugs in sport acting on the b-adrenergic system. Br. J. Pharmacol., vol. 154, pp. 584–597. DOI: 10.1038/bjp.2008.164.

Xie L., Chen L., Gu P., Wei L., Kang X. A convenient method for extraction and analysis with high-pressure liquid chromatography of catecholamine neurotransmitters and their metabolites. J. Vis. Exp., vol. 133, pp. 1–10. DOI: 10.3791/56445.

Barco S., Verly I., Corrias M.V., Sorrentino S., Conte M., Tripodi G., Tytgat G., Kuilenburg A.V., Ham M.V., Velden M.S., Garaventa A., Cangemi, G. Plasma free metanephrines for diagnosis of neuroblastoma patients. Clin. Biochem., vol. 66, pp. 57–62. DOI: 10.1016/j.clinbiochem.2019.02.012.

Boghosian T., Mazzoni I., Barroso O., Rabin O. Investigating the use of stimulants in out-of-competition sport samples. J. Anal. Toxicol., vol. 35, pp. 613–616. DOI: 10.1093/anatox/35.9.613.

WADA Prohibited list 2020 (2020). Available at: https://www.wada-ama.org/sites/default/files/wada_2020_english_prohibited_list.pdf [accessed 21 May 2020]

Okumura T., Nakajima Y., Matsuoka M., Takamatsu T. Study of salivary catecholamines using fully automated columnswitching high-performance liquid chromatography // J. Chromatogr. В, vol. 694, pp. 305–316. DOI: 10.1016/S0378-4347(97)00106-0.

Roy A., Pickar D., De Jong J., Karoum F., Linnoila M. Norepinephrine and Its Metabolites in Cerebrospinal Fluid, Plasma, and Urine Relationship to Hypothalamic-Pituitary-Adrenal Axis Function in Depression. Arch Gen Psychiatry, vol. 45, pp. 849-857. DOI:10.1001/archpsyc.1988.01800330081010.

Hubbard K. E., Wells A., Owens T. S., Tagen M., Fraga C. H., Stewart C. F. Determination of dopamine, serotonin, and their metabolites in pediatric cerebrospinal fluid by isocratic high performance liquid chromatography coupled with electrochemical detection. Biomed. Chromatogr., vol. 24, pp. 626–631. DOI: 10.1002/bmc.1338.

Whiting, M.J. Simultaneous measurement of urinary metanephrines and catecholamines by liquid chromatography with tandem mass spectrometric detection // Ann. Clin. Biochem., vol. 46, pp. 129–136. DOI: 10.1258/acb.2008.008180.

Sakaguchi Y., Yoshida H., Hayama T., Itoyama M., Todoroki K., Yamaguchi M., Nohta H. Selective liquid-chromatographic determination of native fluorescent biogenic amines in human urine based on fluorous derivatization. J. Chromatogr. A, vol. 1218, pp. 5581–5586. DOI: 10.1016/j.chroma.2011.05.076.

LC–MS/MS determination of catecholamines in urine using FMOC-Cl derivatization on solid-phase extraction cartridge. Chromatographia, vol. 81, pp. 1487–1494. DOI: 10.1007/s10337-018-3610-5

van der Hoorn F.A.J., Boomsma F., Man in’t Veld A.J., Schalekamp M.A.D.H. Improved measurement of urinary catecholamines by liquid–liquid extraction, derivatization and highperformance liquid chromatography with fluorometric detection. J. Chromatogr., vol. 563, pp. 348–355. DOI: 10.1016/0378-4347(91)80041-a.

Yan J., Kuzhiumparambil U., Bandodkar S., Solowij N., Fu S. Development and validation of a simple, rapid and sensitive LC-MS/MS method for the measurement of urinary neurotransmitters and their metabolites. Anal. Bioanal. Chem., vol. 409, pp. 7191–7199. DOI: 10.1007/s00216-017-0681-3.

van der Hoorn F.A.J., Boomsma F., Man in’t Veld A.J., Schalekamp M.A.D.H. Determination of catecholamines in human plasma by high-performance liquid chromatography with electrochemical detection. J. Chromatogr., vol. 487, pp. 17–28. DOI: 10.1016/s0378-4347(00)83003-0.

Cai, H-L., Zhu R-H., Li H-D. Determination of dansylated monoamine and amino acid neurotransmitters and their metabolites in human plasma by liquid chromatographyelectrospray ionization tandem mass spectrometry // Anal. Biochem., vol. 396, pp. 103–111. DOI: 10.1016/j.ab.2009.09.015.

Vitali L., Favere V. T., Micke G. A. A new method to determine biological sample volume by short end multiple injection capillary electrophoresis: Application in determination of nitrate and thiocyanate in human saliva. J. Chromatogr. A., vol. 1218, pp. 2327–2333. DOI: 10.1016/j.chroma.2011.02.035.

Martí-Álamo S., Mancheño-Franch A., Marzal-Gamarra C., Carlos-Fabuel L. Saliva as a diagnostic fluid. Literature review. J Clin Exp Dent., vol. 4, pp. 237–243. DOI: 10.4317/jced.50865.

Ferguson DB. Current diagnostic uses of saliva. J. Den. Res., vol. 66., 1987, pp. 420–424. DOI: 10.1177/00220345870660020601.

Drobitch R. K., Svensson C. K. Therapeutic drug monitoring in saliva. An Update. Clin. Pharmacokinet., vol. 23, pp. 365–379. DOI: 10.2165/00003088-199223050-00003.




DOI: https://doi.org/10.15826/analitika.2020.24.4.004

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.